EL MOSQUITO CULEX QUINQUEFASCIATUS, UNA PLAGA URBANA

Martha Giselle Rivera Pineda Sandra Patricia Garzón Lozano Luz Inés Villarreal Salazar

Resumen


El mosquito Culex quinquefasciatus ha surgido como una plaga urbana de importancia sanitaria en Bogotá y sus alrededores. Su presencia es favorecida por la proliferación de una planta acuática, el buchón, cuyo crecimiento es estimulado por vertimientos de aguas residuales en ríos y embalses. Dentro de los diferentes tipos de control posibles de este insecto plaga, se destaca el control biológico, el cual presenta ventajas en cuanto a su eficiencia y bajo impacto ambiental.


Palabras clave


Culex quinqufasciatus , buchón, control biológico

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Referencias


Alves, S.B. (1986). Fungos entomopatogénicos. En Alves, S.B. (Ed.), Controle Microbiano de Insectos.( Cap. 6, pp. 73-126), Sao Pulo, Brasil: Editora Manole Ltda.

Bisset, J., Rodríguez, M.M., Díaz, C & Soca, A. (1998). Estudio de la resistencia en una cepa de Culex quinquefasciatus, procedente de Medellín, Colombia. Revista Cubana de Medicina Tropical. 50 (2), 133-137.

Bustillo P, A.E., Cárdenas, M.R., Villalba G, D.A., Benavides, M.P., Orozco H, J., & Posada, F.F. (1998). Manejo integrado de la broca del café Hypothenemus hampei (Ferrari) en Colombia. Chinchiná (Colombia),

CENICAFE

Butt, T.M. (1990). Fungal infection processes: A minireview. Vth. International. Colloque Invertebrate Pathology, Adelaide. (121-124): Society for Invertebrate Pathology.

Charnley, A.K. (1989) Mycoinsecticides: Present use and future prospects. In: A.K. Charnley (Ed). Progress and Prospects in Insect Control, BCPC Mono. No.43..

Cheong H, R.K. Dhesi and S.S. Gill. (1997). Marginal cross-resistance to mosquicidal Bacillus thuringiensis strains in Cry 11A-resistant larvae: presence of Cry 11A-like toxins in these strains. FEMS Microbiol Lett. 153: 419-424.

Da Costa, G.L., De Moraes, A.M. & De Oliveira, P.C. (1998). Pathogenic action of Penicillium species on mosquito vectors of human tropical diseases. Journal of Basic Microbiology. 38 (5-6), 337–341.

Escriche B, B. Tabashnik, N. Finson and J. Ferre. (1995). Immunohistochemical detection of binding of CryIA crystal proteins of Bacillus thuringiensis in highly resistant strains of Plutella xylostella (L.) from Hawaii. Biochem. Biophys. Res. Commun. 212: 388-395.

Ferron, P. 1978. Biological Control of Insect Pests by Entomogenous Fungi. Annual Review of Entomology 23:409-442.

Goddard, L.B., Roth, A.E., Reisen, W.K. & Scott, T.W. (2002). Vector competence of California mosquitoes for West Nile Virus. Em Infect Dis, 8, 1385-91.

Gómez, M.I., Villamizar, L.F., & Cotes, A.M. (1997). Producción masiva y preformulación de Metarhizium spp. para el control biológico de la langosta llanera. Revista Colombiana de Entomología. 23, 3-4.

Keller, M., B. Sneh, N. Strizhov, E. Prudovsky, A. Regev and C. Koncz. (1996). Digestion of delta-endotoxin by gut proteases may explain reduced sensitivity of advanced instar larvae of Spodoptera litoralis to CryIC. Insect Biochem. Mol. Biol. 26: 365-373.

Londoño, M.E. (2002). Control Biológico de la Chiza (Coleoptera: Melolonthidae). En: Control Biológico, Componente fundamental del Manejo Integrado de Plagas en una Agricultura Sostenible: 40-48. Ed. A. LópezÁvila. Corpoica, Bogotá, Colombia.

López-Ávila, A. (2002). Control Biológico: Componente fundamental del Manejo Integral de Plagas en una Agricultura Sostenible. En Memorias I Curso-Taller Internacional. (2da Ed): Programa Nacional de Manejo

Integrado de Plagas Corpoica.

López, L.C.C., Steciow, M.M., & García, J.J. (1999). Registro más austral del hongo Leptolegnia chapmanii (Oomycetes: Saprolegniales) como patógeno de larvas de mosquitos (Diptera: Culicidae). Revista Iberoamericana de Micoogíal. 16, 143-145.

Sweeney, A.W. (1981). Preliminary field tests of the fungus Culicinomyces against mosquito larvae in Australia. Mosquito News 41, 470-476.

Marino, H. (1995). Estudios Básicos de Dípteros Hematófagos como modelo para la implementación en áreas problema de estrategias de control biológico y/o integrado. Buenos Aires; CIC.- CEPAVE– UNLP/

CONICET.

Mulla, M.S., Thavara, U., Tawatsin, A., Chomposri, J. and Su, T. (2007). Emergence of Resistance and Resistance Management In Field Populations of Tropical Culex quinquefasciatus to the Microbial Control Agent Bacillus Sphaericus. Journal of the American Mosquito Control Association: Vol. 19, No. 1, pp. 39–46.

Orduz, S., Zuluaga, J., Díaz, T., & Rojas, W. (1992). Five new isolates of the mosquito pathogenic fungus Lagenidium giganteum (Oomycets:Lagenidiales) from Colombia. Men Inst Os Cruz. 87, 597-599.

Rao, D.R., T.R. Mani, R. Rajendran, A.S. Joseph, A. Gajanana and R. Reuben. (1995). Development of a high level of resistance to Bacillus sphaericus in a field population of Culex quinquefasciatus. J. A. Mosq. Control Assoc. 12: 247-250.

Rivas, F., Díaz, L., Cárdenas, V., Daza, E., Bruzón, L., & Alcalá, A. (1997). Epidemic Venezuelan equine encephalitis in La Guajira, Colombia. Journal Infection Disease; 175:828-32.

Rivera P, G., Pinto M, L. (2002). Evaluación de la patogenicidad de aislamientos nativos de hongos entomopatógenos sobre el gusano blanco de la papa Premnotrypes vorax (Hustache). Revista Colombiana de Biotecnología. 3, 53-65.

Roberts, D.W, & Yendol, W.G. (1971). Use of fungi for microbial control of insects. Microbial Control of Insects and mites. Academic Press. London. P 125-149.

Rodcharoen, J. and M. S. Mulla. (1996). Cross resistance to Bacillus sphaericus strains in Culex quinquefasciatus. J. Am. Mosq. Control Assoc. 12: 247-250.

Salazar, M.J., & Moncada, L.I. (2004). Ciclo de vida de Culex quinquefasciatus Say 1826 (Diptera: Culicidae) bajo condiciones no controladas en Bogotá. Biomédica, 24, 385-92.

Scholte, E.J., Knols, B.G.I., Samson, R.A., & Takken, W. (2004). Entomopathogenic fungi for mosquito control: A review. Journal of Insect Science, 4:19. Martha Giselle Rivera Pineda - Sandra Patricia Garzón Lozano - Luz Inés Villarreal Salazar

Scholte, E.J., Njiru, B.N., Smallgange, R.C., Takken, W., & Knols, B.G.I. (2003). Infection of malaria (Anopheles gambiae s.s.) and filariasis (Culex quinquefasciatus) vectors with the entomopathogenic fungus

Metarhizium anisopliae. Malaria Journal, 2, 29

Schrieber, E.T.; Jones, C. (1990). Mosquito Control Handbook: An Overview of Biological Control. University of Florida. Extension. Institute of Food and Agricultural Science.

Sweeney, A.W. (1981). Preliminary field tests of the fungus Culicinomyces against mosquito larvae in Australia. Mosquito News 41, 470-476.

Tabashnik, B.E., T. Malvar, Y.B. Liu, N. Finson, D. Borthakur and B.S. Shin. (1996). Cross resistance of the diamondback moth indicates altered interactions with domain II of Bacillus thuringiensis toxins. Appl.

Environ. Microbiol. 62: 2839-2844.

Tabashnik, B.E., Y.B. Liu, N. Finson, L. Masson and D.G. Heckel. (1997). One gene in diamonback moth confers resistance to four Bacillus thuringiensis toxins. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94: 1640-1644.

Villareal, L.I., & González, C.J. (1995). ”Familia Culicidae - larvas de especies vectoras en Colombia”. En SOCOLEN Sociedad Colombiana de Entomología (Ed). Seminario Invertebrados acuáticos y su utilización

en estudios ambientales. 49-73,

Yuan Z M; Pei G F; Regis L; Nielsen-Leroux C; Cai Q X. (2003). Cross-resistance between strains of Bacillus sphaericus but not B. thuringiensis israelensis in colonies of the mosquito Culex quinquefasciatus. Medical

and veterinary entomology: Vol.17(3):251-256.

Zuluaga, I.; Duque, M. 1993. La investigación sobre el control biológico a través de quince años de SOCOLEN: Caracterización y enfoque. En: Control Biológico en Colombia. Historia, avances, proyecciones. Palmira.




DOI: http://dx.doi.org/10.26564/19001355.287

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DOI: https://doi.org/10.26564/issn.1900-1355